PPR-терапия коленного сустава в Тюмени: как проходит процедура и чего ожидать?
Этот метод показывает высокую эффективность при лечении артрозов (гонартроза), артритов, травм менисков и связок.
Stericef.
Цефалоспорины || Цефалоспорины 3-го поколения
Полные аналоги по веществу
Аналоги по действию
J01DD04 Цефтриаксон.
В сухом, защищенном от света месте, при температуре не выше 25 °C.
Хранить в недоступном для детей месте.
2 года.
Не применять по истечении срока годности, указанного на упаковке.
Www.fda.gov и www.rxlist.com, 2021.
Белый или желтоватый, кристаллический, слегка гигроскопичный порошок. Свободно растворим в воде, слабо растворим в метаноле, очень слабо растворим в этаноле. Молекулярная масса 554,59 Да (свободная кислота).
Фармакодинамика.
Исследования in vitro >in vitro показывают, что бактерицидное действие цефтриаксона является результатом ингибирования синтеза клеточной стенки бактерий. В E.coli цефтриаксон показал высокое сродство к пенициллинсвязывающим белкам (PBP) 1a и 3 и умеренное сродство к PBP 1b и 2. У H.influenzae наибольшее сродство было показано к PBP 4 и PBP 5. Сродство к PBP 4 было в 35 раз больше, чем к PBP 3, в 10 раз больше, чем к PBP 2, и примерно в 100 раз больше, чем к PBP 1. Морфологические изменения, возникающие в результате связывания PBP, включают образование нитей или утолщение клеточной стенки и мембраны, а затем лизис клеток.
Микробиология.
Активность цефтриаксона in vitro >in vitro в отношении различных грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов представлена в таблице 1.
Таблица 1.
Совокупная доля штаммов, рост которых ингибируется при указанных и меньших концентрациях цефтриаксона1.
| Микроорганизм (количество штаммов) | Концентрация цефтриаксона, мг/л | ||||||||||||||
| 0,0078 | 0,016 | 0,031 | 0,0625 | 0,125 | 0,25 | 0,5 | 1 | 2 | 4 | 8 | 16 | 32 | 64 | 128 | |
| Грамотрицательные аэробы | |||||||||||||||
| Acinetobacter anitratum (28) | 11 | 39 | 96 | 100 | |||||||||||
| Acinetobacter calcoaceticus (50) | 2 | 6 | 12 | 24 | 32 | 66 | 96 | 100 | |||||||
| Acinetobacter Iwoffi (10) | 10 | 40 | 50 | ||||||||||||
| сitrobacter freundii (21) | 5 | 33 | 62 | 67 | 71 | 95 | |||||||||
| Enterobacter aerogenes (17) | 24 | 47 | 71 | 82 | 88 | 94 | 100 | ||||||||
| Enterobacter cloacae (40) | 5 | 28 | 50 | 55 | 65 | 75 | 90 | 93 | |||||||
| Escherichia coli (47) | 6 | 66 | 88 | 94 | 98 | 100 | |||||||||
| Haemophilus influenzae (16) | 86 | 94 | 100 | ||||||||||||
| Klebsiella oxytoca (21) | 50 | 90 | |||||||||||||
| Klebsiella species (49) | 50 | 90 | |||||||||||||
| Klebsiella pneumoniae (56) | 5 | 41 | 86 | 100 | |||||||||||
| Neisseria gonorrhea (10)2 | 90 | 100 | |||||||||||||
| Neisseria meningitidis (22)2 | 59 | 68 | 77 | 100 | |||||||||||
| Proteus inconstans (5) | 20 | 80 | 100 | ||||||||||||
| Proteus mirabilis (40) | 60 | 95 | 100 | ||||||||||||
| Proteus morganii (40) | 18 | 43 | 58 | 75 | 85 | 90 | 93 | 98 | 100 | ||||||
| Proteus rettgeri (12) | 42 | 58 | 75 | 92 | 100 | ||||||||||
| Proteus vulgaris (29) | 3 | 14 | 31 | 52 | 72 | 86 | 90 | 97 | 100 | ||||||
| Pseudomonas aeruginosa (64) | 5 | 28 | 52 | 73 | 95 | 97 | |||||||||
| Pseudomonas cepacia (7) | 14 | 43 | 71 | 100 | |||||||||||
| Pseudomonas fluorescens (8) | 25 | 75 | |||||||||||||
| Pseudomonas maltophilia (9) | 11 | 22 | 67 | 78 | 100 | ||||||||||
| Pseudomonas putida (9) | 11 | 33 | 78 | 100 | |||||||||||
| Salmonella species (18) | 50 | ||||||||||||||
| Salmonella typhi (30)2 | 3 | 7 | 43 | 100 | |||||||||||
| Shigella (11)2 | 9 | 55 | 73 | 82 | 100 | ||||||||||
| Serratia marcescens (45) | 4 | 20 | 38 | 47 | 58 | 62 | 64 | 78 | 96 | 98 | |||||
| Грамположительные аэробы | |||||||||||||||
| Staphylococcus aureus (34) | 15 | 85 | 91 | 97 | |||||||||||
| Staphylococcus epidermidis (22) | 9 | 23 | 36 | 50 | 68 | 82 | 95 | ||||||||
| Streptococcus agalacticae (25) | 48 | 96 | 100 | ||||||||||||
| Streptococcus pneumoniae (88) | 26 | 39 | 55 | 80 | 90 | 100 | |||||||||
| Streptococcus pyogenes (15) | 100 | ||||||||||||||
| Грамотрицательные анаэробы | |||||||||||||||
| вacteroides sp. (56) | 2 | 4 | 5 | 13 | 29 | 55 | 71 | 84 | 91 | ||||||
| Fusobacterium sp. (8) | 13 | 25 | 38 | 50 | 63 | ||||||||||
| Грамположительные анаэробы | |||||||||||||||
| сlostridium sp. (10) | 10 | 20 | 50 | 60 | 70 | 80 | 100 | ||||||||
| Peptococcus sp. (15) | 33 | 47 | 53 | 66 | 73 | 100 | |||||||||
| Peptostreptococcus sp. (8) | 13 | 50 | 88 | 100 | |||||||||||
1 Количество посевных бактерий колебалось от 103 до 106 клеток/мл.
2 Нет данных о размере посевной культуры.
Устойчивые к метициллину стафилококки и большинство штаммов энтерококков, Streptococcus faecalis, стрептококков группы D, сlostridium difficile и Listeria monocytogenes устойчивы к цефтриаксону.
Соотношение минимальной бактерицидной (MБК) и минимальной ингибирующей (МИК) концентрации цефтриаксона для случайно выбранных микроорганизмов показано в таблице 2.
Таблица 2.
Соотношение МБК/MИК цефтриаксона для случайно выбранных восприимчивых штаммов.
| Соотношение MБК/MИК | |
| сitrobacter freundii (6) | 2 |
| Enterobacter cloacae (8) | 2,75 |
| Escherichia coli (8) | 1,38 |
| Klebsiella pneumoniae (8) | 1,13 |
| Proteus mirabilis (8) | 2,88 |
| Proteus morganii (5) (Morganella morganii) | 1 |
| Pseudomonas aeruginosa (8) | 5,25 |
| Serratia marcescens (8) | 1,13 |
Влияние количества посевных бактерий на активность цефтриаксона зависело от исследуемого штамма. Увеличение количества посевных бактерий со 103 до 105 КОЕ/мл практически не повлияло ни на МИК, ни на MБК для ряда штаммов бактерий, включая продуцентов бета-лактамаз. Однако 100-кратное увеличение количества посевных бактерий со 105 до 107 КОЕ/мл привело к увеличению MИК в 8-533 раза и >32-4267-кратному увеличению MБК для P.aeruginosa, S.marcescens и P.vulgaris, а также к увеличению MИК в 125-8333 раза и >8-8333-кратному увеличению MБК для продуцентов бета-лактамазы. Увеличение размера посевного материала в 10 раз со 107 до 108 КОЕ/мл сопровождалось увеличением MИК для S.marcescens и P.vulgaris в 64-1000 раз.
Влияние рН в диапазоне от 6 до 8 показано в таблице 3.
Таблица 3.
Влияние рН на активность цефтриаксона in vitro1.
| Микроорганизм | MИК, мг/л (при указанных рН) | ||
| pН 8 | рН 7 | рН 6 | |
| S.aureus (2) | 3,13-6.25 | 3,13 | 0,78 |
| S.epidermidis (1) | 1,56 | 3,13 | 1,56 |
| S.pyogenes (1) | 0,025 | ≤0,012 | ≤0,012 |
| E.coli (3) | ≤0,012-0,1 | 0,025-0,1 | ≤0,012-0,2 |
| K.pneumoniae (1) | 0,05 | 0,05 | 0,05 |
| S.typhimurium (2) | 0,025-0,1 | 0,05-0,2 | 0,05-0,2 |
| S.marcescens (1) | 1,56 | 0,78 | 0,2 |
| E.cloacae (1) | 1,56 | 12,5 | 25 |
| P.vulgaris (3) | ≤0,012-0.025 | ≤0,012 | ≤0,012-0,025 |
| P.rettgeri (1) | 0,025 | 0,1 | 1,56 |
| P.mirabilis (1) | ≤0,012 | 0,025 | ≤0,012 |
| P.aeruginosa (2) | 3,13-12.5 | 3,13-12,5 | 6,25-12,5 |
1 Агар с сердечной вытяжкой. Посевной материал 106 клеток/мл.
Знчения МИК для лабораторных штаммов S.aureus, E.coli, P.mirabilis, P.vulgaris и S.marcescens находились в пределах одного разведения друг от друга при измерении в следующих средах: питательный агар, DST-агар, среда для антибиотиков № 1 и агар Мюллера-Хинтона. Однако в отношении P.aeruginosa цефтриаксон был в 2-8 раз активнее в питательном агаре, чем в других средах.
Влияние сыворотки крови человека на микрофлору и МБК для различных бактерий показано в таблице 4.
Таблица 4.
Влияние сыворотки крови на МИК и МБК цефтриаксона, мг/л.
| Изосенситестовый бульон | Изосенситестовый бульон +25% человеческой сыворотки | Изосенситестовый бульон +75% человеческой сыворотки | ||||
| МИК | МБК | МИК | МБК | МИК | МБК | |
| E.coli (2) | 0,06 | 0,06 | 0,06-0,12 | 0,06-0,12 | 0,12-0,25 | 0,25 |
| K.pneumoniae (2) | 0,06 | 0,06 | 0,25 | 0,25 | 0,5 | 0,5 |
| 0,008 | 0,015 | 0,015 | 0,03 | 0,06 | 0,06 | |
| P.vulgaris (1) | 0,06 | 0,25 | 0,25 | 0,25 | 0,5 | 2 |
| 4-32 | 4-32 | 4-64 | 16-64 | 8-64 | 64-128 | |
| 2 | 4 | 4-16 | 8-16 | 8-16 | 16-32 | |
Относительная скорость гидролиза цефтриаксона различными бета-лактамазами приведены в таблице 5.
Таблица 5.
Относительная скорость гидролиза цефтриаксона.
| Источник бета-лактамазы | Тип бета-лактамазы1 | Классификация Ричмонда-Сайкса | Относительная скорость гидролиза2 |
| Escherichia coli3 | Pen | V | 0,1 |
| Klebsiella pneumoniae | сepha | 111A | 6 |
| Enterobacter cloacae4 | сepha | 1A | 11 |
| сitrobacter freundii4 | сepha | − | 21 |
| Serratia marcescens | сepha | 1A | 0 |
| Morganella morganii4 | сepha | 1A | 10 |
| Proteus vulgaris4 | сepha | 1C | 25 |
| Shigella sonnei3 | Pen | − | 0.2 |
| Pseudomonas aeruginosa3 | Pen | V | 0 |
| Pseudomonas aeruginosa | сepha | 1D | 36 |
| вacteroides fragilis4 | сepha | − | 128 |
| Staphylococcus aureus4 | Pen | − | 0 |
| вacillus cereus | вoth | − | 16 |
1 Pen - в основном субстрат пенициллина; сepha - в основном субстрат цефалоспорина; вoth - оба типа.
2 Показатель по отношению к цефалоридину (100%), за исключением S.aureus и в.cereus, данные для которых основаны на гидролизе пенициллина G (100%).
3 Опосредованный плазмидами.
4 Индуцировано цефалотином.
Резистентность.
Приобретение устойчивости к цефтриаксону было изучено in vitro >in vitro у восьми штаммов E.coli. Значения MИК определяли до и после пяти пассажей через среды, содержащие сублетальные дозы цефтриаксона. Как показано в таблице 6, увеличение резистентности к цефтриаксону варьировало от 2 до 1024 раз.
Таблица 6.
Восприимчивость чувствительных и устойчивых к бета-лактамам штаммов E.coli к цефтриаксону1.
| Штамм | MИК, мг/л | Увеличение MИК | Исходная восприимчивости к бета-лактамам | ||
| До прохода | После прохода | Цефазолин | Ампициллин | ||
| NIHJ | 0,1 | 0,2 | 2 | S | S |
| IW431 | 0,025 | 0,39 | 16 | S | S |
| IU586 | 0,05 | 0,2 | 4 | S | R2(C)3 |
| IW432 | 0,1 | 25 | 256 | S | R(С) |
| IW434 | 0,1 | 3,13 | 32 | R | R(С) |
| IV57 | 0,2 | 25 | 128 | R | R(С) |
| IV84 | 0,78 | 100 | 128 | R | R(С) |
| IU581 | 0,2 | >100 | ≥1024 | R | R(R)4 |
1 S - чувствительный, R - устойчивый, (C) - устойчивость, опосредованная хромосомами, (R) - устойчивость, опосредованная R-плазмидой.
Взаимодействие с другими антибиотиками.
Комбинации цефтриаксона с аминогликозидами приводили к синергическим эффектам ( по крайней мере к 4-кратному снижению MИК обоих антибиотиков) в отношении многих штаммов Pseudomonas aeruginosa и Streptococcus faecalis in vitro >in vitro (таблица 7), даже при устойчивости микрорганизмов к антибиотикам по отдельности. Комбинация цефтриаксона с цефокситином приводила либо к синергизму, либо к антагонизму, в зависимости от вида и штамма (таблица 8).
В исследованиях in vivo >in vivo синергизм с гентамицином нечасто наблюдался в отношении синегнойной палочки (0 из 8 штаммов при соотношении цефтриаксон/аминогликозид 1:1 или 1:8), тобрамицином (1 из 8 штаммов при соотношении 1:1 и 0 из 8 при соотношении 1:8) и амикацином (0 из 6 штаммов при соотношении 1:1 и 2 из 6 при соотношении 1:8). Синергизма в отношении S.faecalis не наблюдалось ни с гентамицином, ни с амикацином. Антагонизм между цефтриаксоном и цефокситином наблюдался у 5 из 5 штаммов синегнойной палочки.
Таблица 7.
Взаимодействие in vitro >in vitro цефтриаксона и аминогликозидов.
| Аминогликозид | Чувствительность1 | Количество штаммов | Количество (%) штаммов при указанном соотношении цефтриаксона и аминогликозида2 | ||
| Оптимальное соотношение синергизма | Синергизм при соотношении 8:1 | ||||
| Гентамицин | P.aeruginosa | sens | 20 | 17 (85) | 11 (55) |
| resis3 | 7 | 3 (43) | 1 (14) | ||
| resis4 | 6 | 3 (50) | 0 | ||
| resis5 | 3 | 2 (67) | 0 | ||
| S.faecalis | 1 | −6 | 0 | ||
| S.faecalis | 9 | − | 9 (100) | ||
| E.coli | sens | 3 | − | 0 | |
| S.typhimurium | sens | 2 | − | 0 | |
| Prot.mirabilis | sens | 1 | − | 0 | |
| Prot.vulgaris | sens | 2 | − | 0 | |
| Prot.morganii | sens | 1 | − | 0 | |
| Prot.rettgeri | sens | 1 | − | 0 | |
| Klebs.pneum. | sens | 2 | − | 0 | |
| Ent.cloacae | sens | 1 | − | 0 | |
| resisa | 2 | − | 0 | ||
| S.marcescens | sens | 3 | − | 2 (67) | |
| Staph.aureus | sens | 2 | − | 0 | |
| Тобрамицин | sens | 20 | 15 (75) | 5 (25) | |
| 10 | 9 (90) | 9 (20) | |||
| 6 | 4 (67) | 0 | |||
| S.faecalis | 1 | − | 0 | ||
| S.faecalis | 9 | − | 9 (100) | ||
| E.coli | sens | 3 | − | 0 | |
| sens | 2 | − | 0 | ||
| sens | 1 | − | 0 | ||
| sens | 1 | − | 0 | ||
| sens | 1 | − | 0 | ||
| sens | 1 | − | 0 | ||
| Klebs. pneum. | sens | 2 | − | 0 | |
| sens | 3 | − | 0 | ||
| sens | 1 | − | 0 | ||
| 2 | − | 0 | |||
| sens | 1 | − | 0 | ||
| Амикацин | sens | 23 | 16 (70) | 13 (57) | |
| 13 | 11 (85) | 6 (46) | |||
| E.coli | sens | 3 | − | 0 | |
| sens | 2 | − | 0 | ||
| sens | 1 | − | 0 | ||
| sens | 2 | − | 0 | ||
| sens | 1 | − | 0 | ||
| sens | 1 | − | 0 | ||
| sens | 2 | − | 0 | ||
| sens | 1 | − | 0 | ||
| 2 | − | 0 | |||
| sens | 3 | − | 0 | ||
| sens | 2 | − | 0 | ||
1 sens - микроорганизмы были классифицированы как чувствительные или с промежуточной чувствительностью к обоим антибиотикам. Для цефтриаксона это было ≤50 мг/л, для гентамицина ≤6,3 мг/л, для тобрамицина ≤6,3 мг/л и для амикацина ≤12,5 мг/л.
2 Количество штаммов не обязательно совпадает с общим количеством протестированных штаммов. Это связано с тем, что для некоторых штаммов не наблюдалось никакого взаимодействия.
3 Микроорганизм(ы) был (были) устойчив(ы) к цефтриаксону.
4 Микроорганизм(ы) был (были) устойчив(ы) к исследуемому аминогликозиду.
5 Микроорганизм(ы) был (были) устойчив(ы) к цефтриаксону и исследуемому аминогликозиду.
6 Нет данных.
Таблица 8.
Взаимодействие in vitro >in vitro цефтриаксона и цефокситина.
| Количество (%)1 для штаммов в соотношении 1:1 | |||
| Синергизм | Антагонизм | ||
| 12 | 0 | 11 (92) | |
| Enterob.cloacae | 7 | 0 | 4 (57) |
| P.morganii | 1 | 0 | 1 (100) |
| 3 | 0 | 2 (67) | |
| сitr.freundii | 2 | 0 | 2 (100) |
| вact.fragilis | 14 | 13 (93) | 0 |
| Strep.faecalis | 19 | 19 (100) | 0 |
1 Количество штаммов не обязательно совпадает с общим количеством протестированных штаммов. Это связано с тем, что для некоторых штаммов не наблюдалось никакого взаимодействия.
Чувствительность.
Стандартный тест на чувствительность (модифицированный метод Кирби-Бауэра) с использованием диска с 30 мкг цефтриаксона и тесты на чувствительность с разведением следует интерпретировать в соответствии с критериями, приведенными в таблице 9.
Таблица 9.
Критерии чувствительности к цефтриаксону.
| Чувствительность | Диаметр зоны (диск с 30 мкг цефтриаксона), мм | Приближенная корреляция MИК, мг/л |
| Чувствительные | ≥18 | ≥16 |
| Умеренно чувствительные | 14-17 | 32 |
| Устойчивые | ≤13 | ≥64 |
Тесты in vitro >in vitro показали, что цефтриаксон активен в отношении определенных штаммов, которые оказались устойчивыми при использовании других дисков с бета-лактамными антибиотиками. Поэтому при проведении тестов на чувствительность рекомендуется использовать только диск с цефтриаксоном (содержащий 30 мкг цефтриаксона). Аналогичным образом, диск с цефтриаксоном не следует использовать для тестирования чувствительности к другим цефалоспоринам. Диаметры зон, полученные с помощью диска с 30 мкг цефтриаксоном, и MИК, определенные с помощью тестирования чувствительности к цефтриаксону с разведением, для рекомендуемых эталонных штаммов, приведены в таблице 10.
Таблица 10.
| Эталонный штамм | Диаметр зоны, мм | |
| E.coli (ATCC 25922) | 29-35 | 0,016-0,5 |
| S.aureus (ATCC 25923) | 22-28 | 1-2 |
| P.aeruginosa (ATCC 27853) | 17-23 | 8-64 |
Тестирование на чувствительность с помощью дискового метода или метода разведений может не подходить для видов Pseudomonas из-за 40 и 31% случаев ложноположительны результатов соответственно.
Фармакокинетика.
Фармакокинетика цефтриаксона характеризуется высокой степенью связывания с белками плазмы в терапевтическом диапазоне (свободная фракция цефтриаксона остается относительно постоянной на уровне приблизительно 5-10% при концентрациях цефтриаксона в плазме крови менее 200 мкг/мл и увеличивается примерно до 40% при 650 мкг/мл), отсутствием активной секреции почечными канальцами и примерно 55% выведением почками и 45% выведением через билиарный путь. Связывание цефтриаксона с белками плазмы крови зависит от общей концентрации цефтриаксона. Свободные фракции цефтриаксона при общей концентрации цефтриаксона 4-68, 94-188 и 653 мкг/мл составляют 4-5, 8 и 42% соответственно. В результате фармакокинетика общего цефтриаксона в плазме крови нелинейна. Это демонстрируется менее чем пропорциональным увеличением AUC0-∞ для общего количества цефтриаксона (связанный и несвязанный) при увеличении дозы и зависящем от дозы увеличении dVd, системного плазменного и почечного клиренса. В то же время фармакокинетика несвязанного цефтриаксона линейна.
Почечный клиренс свободного цефтриаксона немного меньше СКФ. Пробенецид не влияет на клиренс цефтриаксона. При дозах 500 мг и более почечный клиренс в отношении общего цефтриаксона (связанный и несвязанный) со временем снижается. Напротив, почечный клиренс свободного цефтриаксона остается относительно постоянным независимо от дозы. Это явление обусловлено повышением связывания цефтриаксона с белками плазмы по мере снижения его концентрации в плазме крови во время выведения. После однократного в/в введения 14C-цефтриаксона двум пациентам мужского пола (23 и 27 лет) выведение радиоактивных веществ было завершено к 100 при этом 90% дозы выводилось в течение первых 48 92% процента радиоактивности, обнаруженной в моче, и примерно 10% радиоактивности, обнаруженной в кале, приходились на неизмененный цефтриаксон. В желчи обнаруживались относительно высокие концентрации неизмененного цефтриаксона. Это может свидетельствовать о том, что цефтриаксон инактивируется кишечной флорой, а не печенью. При многократном введении фракция цефтриаксона, выделяемая с мочой в неизмененном виде, и 1/2T1/2 в конечной фазе выведения остаются неизменными независимо от дозы. Однако AUC уменьшается на 12 и 15%, а dVd и системный плазменный клиренс увеличиваются на 14 и 20 и 12 и 15% после многократного введения доз 1000 и 2000 мг с интервалом 12 ч соответственно. Эти параметры не изменяются при многократном введении цефтриаксона в дозе 500 мг с интервалами 12 Изменения, наблюдаемые при более высоких дозах, возможно, обусловлены нелинейным связыванием цефтриаксона с белками плазмы крови.
Распределение в тканях организма.
Интерстициальная жидкость. Проникновение цефтриаксона в интерстициальную жидкость происходит быстро. Выведение цефтриаксона из интерстициальной жидкости происходит несколько медленнее, чем из плазмы крови.
Спинномозговая жидкость. При дозах, равных или превышающих 35 мг/кг, средняя концентрация цефтриаксона в спинномозговой жидкости была стабильно выше 2 мкг/мл в течение 24 ч после однократной в/м инъекции.
Желчь печени. Концентрация цефтриаксона в желчи печени была измерена в образцах желчи, полученных у восьми пациентов (пять женщин и трое мужчин, средний возраст 64 года), перенесших операцию по поводу хронического холецистита с желчнокаменной болезнью (n=5) или с другими заболеваниями желчевыводящих путей (n=3). Цефтриаксон вводили в дозе 500 мг в/в каждые 12 ч в течение 7 дней. Образцы желчи получали ежедневно через Т-образный дренаж по Керу с различными интервалами после введения. Цефтриаксон был обнаружен во всех образцах. У двух пациентов концентрация цефтриаксона в желчи стабильно составляла −6. Пороговое значение для осаждения кальциевой соли цефтриаксона составляет 3,16×10−4.
Желчь желчного пузыря. Семи пациентам (четыре женщины и трое мужчин, средний возраст (49±16) лет) с относительно нормальным уровнем печеночных ферментов было назначено пять доз (пять пациентов) или три дозы (два пациента) цефтриаксона в/в по 2 г каждые 12 Последняя инъекция была сделана за 0,1-5,3 (в среднем 2,7) ч до холецистэктомии. Концентрация цефтриаксона в желчи желчного пузыря у всех семи пациентов на момент операции колебалась от 2970 до 5884 мкг/мл. Средняя общая концентрация кальция в желчи желчного пузыря составляла (5,1±1,3) ммоль/л. Рассчитанный уровень ионов варьировал от 2,4×10−5 до 6,2×10−5.
В/в введение.
Болюсная инъекция в течение 5 мин, разовая доза. Цефтриаксон, разведенный физиологическим раствором, вводили в виде однократной болюсной инъекции в течение 5 мин шести здоровым добровольцам мужского пола (средний возраст 25 лет) в четырех дозах 150, 500, 1500 и 3000 мг. Общий профиль AUC цефтриаксона в плазме крови для каждой дозы у всех репрезентативных субъектов может быть описан двухэкспоненциальным уравнением.
Среднее выведение с мочой неизмененного препарата в течение 48 или 52 ч составило (58,6±6,6), (64,3±7,3), (65±4,3) и (66,6±9)% для доз 150, 500, 1500 и 3000 мг соответственно. Средняя концентрация цефтриаксона в моче для различных интервалов сбора приведена в таблице 11.
Таблица 11.
Концентрации цефтриаксона в моче после однократной болюсной инъекции.
| Временной интервал, ч | Средняя концентрация цефтриаксона в моче, мкг/мл1 | ||
| Доза 150 мг | Доза 500 мг | Доза 1500 мг | |
| 0-2 | 189±89 | 894±421 | 3483±951 |
| 2-4 | 113±64 | 453±249 | 1530±680 |
| 4-6 | 102±40 | 360±119 | 1093±150 |
| 6-8 | 84±11 | 329±76 | 833±263 |
| 8-10 | 47±19 | 195±66 | 314±188 |
| 10-12 | 43±20 | 117±41 | 323±175 |
| 12-24 | 28±10 | 82±30 | 158±50 |
1 Нет данных о концентрации цефтриаксона в моче при дозе 3000 мг.
Средние значения фармакокинетических параметров цефтриаксона при однократном болюсном в/в ведении приведены в таблице 12.
Таблица 12.
Фармакокинетика цефтриаксона после однократной болюсной инъекции.
| Фармакокинетический параметр | Доза, мг | |||
| 150 | 500 | 1500 | 3000 | |
| AUC0-4 связанного и несвязанного цефтриаксона, мкг·ч/мл | 268±52 | 846±179 | 1980±376 | 2725±293 |
| AUC0-4 несвязанного цефтриаксона, мкг·ч/мл | 10,1±2 | 35,6±8,5 | 106±16 | 196,6±22,7 |
| Плазменный клиренс связанного и несвязанного цефтриаксона1, мл/мин | 9,7±2 | 10,2±21 | 13±2,6 | 18,5±2,1 |
| Плазменный клиренс несвязанного цефтриаксона1, мл/мин | 262±47 | 253±52 | 249±36 | 258±31 |
| Почечный клиренс связанного и несвязанного цефтриаксона2, мл/мин | 6,5±1,3 | 8,2±1,1 | 13,2±1,1 | 33±2,6 |
| Почечный клиренс несвязанного цефтриаксона2, мл/мин | 169±29 | 174±33 | 165±28 | 189±48 |
| Vd связанного и несвязанного цефтриаксона, л | 7±0,5 | 6,7±1,1 | 8,6±0,8 | 12,7±0,9 |
| T1/2 связанного и несвязанного цефтриаксона1, ч | 8,6±1,7 | 7,7±1,2 | 7,8±1 | 8±0,7 |
| T1/2 несвязанного цефтриаксона1, ч | 8,6±1,6 | 7,6±1,2 | 7,6±1 | 7,8±0,3 |
1 0-48 ч для доз 150, 500, 1500 мг и 0-52 ч для дозы 3000 мг.
2 0-2 ч для доз 150, 500, 1500 мг и 0-1 ч для дозы 3000 мг.
Инфузия в течение 30 мин, разовая доза. Цефтриаксон, разведенный в 100 мл физиологического раствора, вводили в виде однократной инфузии с постоянной скоростью в течение 30 мин двенадцати здоровым добровольцам (десять мужчин и две женщины, средний возраст 35 лет) в трех дозах 500, 1000 и 2000 мг. Средний общий профиль зависимости концентрации цефтриаксона в плазме крови от времени для каждой дозы был двухфазным и соответствовал линейной двухчастевой модели.
Выведение с мочой неизмененного цефтриаксона в течение 48 ч составило (41±8), (39±5) и (43±10)% для доз 500, 1000 и 2000 мг соответственно. Средняя концентрация цефтриаксона в моче для различных интервалов сбора показана в таблице 13.
Таблица 13.
Концентрация цефтриаксона в моче после однократной инфузии.
| Средняя концентрация цефтриаксона в моче, мкг/мл | |||
| Доза 1000 мг | Доза 2000 мг | ||
| 0-2 | 526±303 | 995±734 | 2692±1403 |
| 2-4 | 366±203 | 855±615 | 1976±1047 |
| 4-8 | 142±63 | 293±163 | 757±437 |
| 8-12 | 87±5 | 147±66 | 274±119 |
| 12-24 | 70±25 | 132±47 | 198±93 |
Был определен ряд фармакокинетических параметров, средние значения которых приведены в таблице 14.
Таблица 14.
Фармакокинетика цефтриаксона после однократной инфузии.
| Фармакокиненический параметр | |||
| 500 | 1000 | 2000 | |
| AUC0-∞ связанного и несвязанного цефтриаксона, мкг·ч/мл | 551±91 | 1006±118 | 1703±203 |
| 8,8±1,22 | 9,2±1,05 | 10,3±1,01 | |
| T1/2 связанного и несвязанного цефтриаксона, ч | 6,5±0,72 | 6,2±0,76 | 5,9±0,69 |
| Плазменный клиренс связанного и несвязанного цефтриаксона, мл/мин | 15,5±2,4 | 16,8±2,1 | 19,8±2,5 |
| Плазменный клиренс несвязанного цефтриаксона (0-2) мл/мин | 7,3±1,3 | 9±1,6 | 15,3±3,9 |
Многократное введение. Семь доз цефтриаксона по 500, 1000 или 2000 мг вводили с 12-часовыми интервалами здоровым добровольцам в виде инфузий с постоянной скоростью в течение 30 мин. Дозы по 500 и 1000 мг были назначены двенадцати мужчинам (средний возраст 29 и 31 год соответственно), а дозы по 2000 мг - одиннадцати мужчинам и одной женщине (средний возраст 33 года). Общие значения maxCmax, сmin и ssCss цефтриаксона в плазме представлены в таблице 15.
Таблица 15.
Общие значения maxCmax, сmin и ssCss цефтриаксона в плазме крови после многократных инфузий.
| сmax, мкг/мл | сmin, мкг/мл | сss, мкг/мл | ||
| 500 | Первая доза | 79±11,5 | 15±4,5 | − |
| Последняя доза | 101±12,7 | 20±5,5 | 41±7 | |
| 1000 | 145±11 | 30±6 | − | |
| 168±25 | 35±9,2 | 72±13 | ||
| 2000 | 255±41 | 45±11 | − | |
| 280±39 | 59±21 | 118±19 | ||
Концентрация цефтриаксона в плазме крови достигла стабильного состояния к 4-му дню. Накопление цефтриаксона в плазме крови после доз 500, 1000 и 2000 мг составило 35, 20 и 21% соответственно. Прогнозируемое накопление составило 40%.
В/м введение.
Биодоступность цефтриаксона при в/м введении составляет приблизительно 100%.
Разовая доза. Цефтриаксон, разведенный либо водой, либо 1% раствором лидокаина, вводили в/м однократно в дозе 500 мг шести здоровым добровольцам мужского пола (средний возраст 36 лет). В течение 72 ч в моче после введения с водой и 1% раствором лидокаина было обнаружено (225±40) и (229±26) мг неизмененного цефтриаксона соответственно. Средняя концентрация цефтриаксона в моче для различных интервалов сбора приведена в таблице 16.
Таблица 16.
Концентрация цефтриаксона в моче после однократного в/м введения в дозе 500 мг.
| Разбавитель вода | Разбавитель 1% раствор лидокаина | |
| 0-2 | 176±129 | 176±135 |
| 2-4 | 223±156 | 215±124 |
| 4-6 | 213±93 | 298±111 |
| 6-8 | 198±96 | 216±83 |
| 8-24 | 99±44 | 111±4 |
Средние значения фармакокинетических параметров приведены в таблице 17. Не было обнаружено существенных различий между этими параметрами для двух способов разведения.
Таблица 17.
Фармакокинетика цефтриаксона после однократного в/м введения в дозе 500 мг.
| Параметр | ||
| 67±9,7 | 55,8±4,5 | |
| AUC0-4 связанного и несвязанного цефтриаксона, мгк·ч/мл | 709±58 | 728±63 |
| 8,5±0,7 | 8,4±0,5 | |
| Почечный клиренс связанного и несвязанного цефтриаксона (0-8 ч), мл/мин | 6,9±0,5 | 6,6±0,5 |
Многократное введение. Семь доз цефтриаксона по 500 или 1000 мг, разведенных 1% раствором лидокаина, вводили в/м с 12-часовыми интервалами двенадцати здоровым добровольцам (десять мужчин и две женщины, средний возраст 36 лет). Значения maxCmax, сmin и ssCss цефтриаксона в плазме крови приведены в таблице 18.
Таблица 18.
Значения maxCmax, сmin и ssCss цефтриаксона в плазме крови после многократных в/м доз.
| 500 | 49±11 | 16±5 | − | |
| 65±8 | 24±6 | 46±6 | ||
| 1000 | 81±12 | 29±7 | − | |
| 114±16 | 39±8 | 70±10 | ||
Cmax цефтриаксона в плазме крови была достигнута через 0,75-3 ч (в среднем через 1,7 ч) после введения. Сss в плазме крови достигалась после третьей дозы при обоих режимах дозирования, при этом наблюдалось поддержание минимального уроня ssCss в плазме к
Этот метод показывает высокую эффективность при лечении артрозов (гонартроза), артритов, травм менисков и связок.
В медицинской практике этот вид МРТ все чаще становится востребованным при черепно-мозговых травмах, мозговой ишемии, эпилепсии, дегенеративных изменений белого вещества у детей и прочих случаях. Часто данные МРТ спектроскопии дополняют информацию, полученную перфузионными методами. Также диагностику назначают при подозрении на объемные образования, однако отметим, что данные спектроскопии не могут однозначно определить гистологический тип опухоли, тем не менее она применяется в дифференциальной диагностике эпендиом, астроцитом и других. Широко используется методика в дифференцировании метастазов и первичных опухолей и для отличия их от инфекционных, демиелинизирующих заболеваний. МР-спектроскопия используется для определения возможного рецидива опухоли в постоперационном периоде.
Вы имеете законное право получить рентген-снимок на руки. Если вам отказывают, обратитесь к руководству медицинского учреждения или подайте письменную жалобу. Сначала уточните, почему снимок не выдают, так как иногда его отправляют напрямую к другому врачу по запросу.
Часто для комплексной оценки тканей головного мозга и позвоночника, а также сосудов, которые питают мозговые ткани, проводится КТ головы и шеи. Особенно это бывает актуально при шейных и мозговых травмах, при воспалительных и опухолевых процессах, а также атеросклерозе, аневризмах, стенозе и других нарушения сосудистого русла шеи, поскольку изменения в кровоснабжении напрямую влияют на работу головного мозга. Возможности выявления нарушений структур головы методом КТ связаны с различным ослаблением рентгеновских лучей при прохождении через нормальные или измененные ткани либо в нарушением нормального анатомического взаимоотношения структур в полости черепа.